在实验室里，你可能遇到这样的困扰：

“我需要合成几十条肽，但报价突然翻倍？”
“厂家老说‘高通量合成’，真的有必要吗？”
“同样是多肽合成，我到底该选高通量还是常规定制？”

别急，这篇文章帮你拆清楚高通量多肽合成和常规定制多肽的差别，以及科研选型的思路。

一、高通量多肽合成和常规定制，根本差别是什么？

一句话总结：

• 常规定制多肽：一条一条做

• 高通量多肽：一批多条同时做

常规定制多肽特点

• 单序列、单反应体系

• 更关注单条肽的纯度和量

• 适合功能验证、机制研究

高通量多肽特点

• 同时合成几十到上千条不同序列

• 每条肽量小，但覆盖序列广

• 高度自动化、标准化

• 适合筛选、探索型实验

本质区别：不是技术高级与否，而是实验目的不同。

二、高通量多肽的核心技术路线

1. 多反应位点并行固相合成

• 每条肽固定在独立树脂上

• 多通道同步进行脱保护、偶联

• 序列独立，交叉污染低

• 兼容标准 Fmoc 固相体系，结果稳定可重复

1. 多肽阵列（Peptide Array）技术

• 多肽直接合成在膜或芯片表面

• 单条肽用量极低

• 高通量筛选理想，但不适合复杂功能实验

1. 自动化液体处理结合固相合成

• 用于几十条到上百条序列

• 自动分液、多反应管并行操作

• 中等通量定制场景最佳

三、高通量多肽的优势

1. 实验效率成倍提升

普通合成几十条肽，需要下单、合成、纯化、检测，周期长、成本高。
高通量一次性完成多条，前期准备大幅缩短。

1. 适合筛选型实验

如果你“不知道哪条有用，但需要全部试一遍”，高通量最合适，例如：

• 表位扫描

• 受体结合位点筛选

• 功能片段定位

1. 单位序列成本低

虽然单条纯度略低、用量小，但按“每条肽成本”算，高通量更划算，尤其是：

• ≥20 条肽

• 单条用量 <5 mg

• 前期探索阶段

1. 标准化、易重复

• 批次差异小

• 数据可比性强

• 便于系统生物学、药物筛选或 AI 辅助设计

四、高通量多肽适合哪些实验？

 非常适合：

• 抗原表位扫描：快速定位免疫识别区域

• 蛋白-多肽相互作用筛选：受体结合肽库初筛

• 药物先导肽筛选：功能肽库活性初筛

• 突变扫描（Alanine Scan 等）：快速比较结构-功能关系

不太适合：

• 单条用量 >50 mg

• 高纯度要求 ≥98%

• 动物实验、临床前研究

• 复杂修饰肽（环化、多位点修饰、标记）

五、高通量 vs 常规定制，一眼对比

六、科研人员该如何选择？

快速判断方法：

1. 是否需要多条肽同时试？

2. 是否处在实验探索或筛选阶段？

3. 单条肽需求量是否不大？

如果答案都是“是”，那高通量几乎一定更合适。
如果你只做少量验证实验、追求高纯度、后续要动物实验，则选择常规定制更合理。

科研用多肽，选“对路”比追“高级”重要

高通量多肽合成并不是替代传统定制，而是在对的阶段，用对的方式，解决对的问题。

理解它的优势、适用场景和成本逻辑，比盲目追求“更高级的技术”更重要。