当实验规模从“几条肽”变成“几十条、上百条肽”时，很多科研人员都会遇到同一个问题：

为什么同样是多肽合成，报价突然翻倍？
为什么厂家反复强调“高通量合成”？
它真的有必要吗？

高通量多肽合成，并不是“更快地合成一条肽”，而是一次性解决“多条、多序列、多变量”的实验需求。
这项技术，正在悄悄改变多肽在科研中的使用方式。

一、什么是高通量多肽合成？和普通合成有什么不同？

简单理解一句话就够了：

普通多肽合成：一条一条做
高通量多肽合成：一批一起做

普通多肽合成的典型特点

• 单序列、单反应体系

• 更关注单条肽的纯度和质量

• 适合功能验证、机制研究

高通量多肽合成的核心思路

• 同时合成几十到上千条不同序列

• 每条肽的量不大，但序列覆盖广

• 高度自动化、模块化流程

本质差异不在“技术高不高级”，而在实验目的不同。

二、高通量多肽合成的核心技术路径

目前主流的高通量多肽合成，主要基于以下几种技术思路：

1. 多反应位点并行固相合成

这是目前最成熟、应用最广的方案。

• 每条多肽固定在独立树脂位点

• 多通道同步进行脱保护、偶联

• 通过程序控制实现并行反应

优势包括：

• 序列独立，交叉污染风险低

• 兼容标准 Fmoc 固相合成体系

• 结果稳定、可重复性好

2. 多肽阵列（Peptide Array）技术

常见于免疫学、蛋白互作研究。

• 多肽直接合成在膜或芯片表面

• 无需切割、纯化

• 可直接用于结合实验或筛选

技术特点：

• 通量极高

• 单条肽用量极低

• 不适合后续复杂功能实验

3. 自动化液体处理结合固相合成

用于中等通量、多序列定制场景：

• 自动分液系统

• 多反应管并行操作

• 适合几十条到上百条多肽

三、高通量多肽合成技术的核心优势

1. 实验效率呈指数级提升

如果用普通方式合成 96 条肽，需要经历：

下单、合成、纯化、检测
周期长、成本高、协调复杂

而高通量方式：

• 一次合成，多序列同步完成

• 实验前期准备时间显著缩短

非常适合探索性研究阶段。

2. 非常适合“筛选型实验”

高通量多肽的最大价值在于：

不知道哪条有用，但需要全部试一遍。

例如：

• 表位扫描

• 受体结合位点筛选

• 功能片段定位

这类实验如果用常规定制方式，成本会非常高，而高通量方案反而更经济。

3. 显著降低单位序列成本

虽然单条多肽的：

• 纯度可能略低

• 用量相对较少

但按“每条序列成本”计算，高通量合成更具性价比，尤其适合：

• 序列数量 ≥20 条

• 单条用量 <5 mg

• 前期探索或初筛阶段

4. 高度适合自动化与标准化实验

• 批次间差异小

• 数据可比性强

• 易于重复实验设计

这对系统生物学、药物筛选、AI 辅助设计实验尤为重要。

四、高通量多肽合成适合哪些实验？

这是科研人员最关心的问题之一。

非常适合的实验类型

1. 抗原表位扫描实验

• 连续重叠肽设计

• 快速定位免疫识别区域

• 广泛用于疫苗、抗体研究

2. 蛋白-多肽相互作用筛选

• 受体结合肽筛选

• 抑制肽库构建

• 功能位点初筛

3. 药物先导肽筛选

• 功能肽库构建

• 活性初筛

• 后续再放大合成关键序列

4. 突变扫描（如 Alanine Scan）

• 同一序列多个变体

• 快速比较结构-功能关系

• 极度依赖高通量合成

不太适合的场景

• 需要单条多肽 >50 mg

• 要求 ≥98% 高纯度

• 用于动物实验、临床前研究

• 复杂修饰肽（多位点修饰、环化加标记）

这类需求更适合单条定制多肽合成。

五、高通量多肽 vs 常规定制多肽，对比一眼看懂

合成数量：
高通量多肽合成适合多条（10–1000+），
常规定制多肽适合单条或少量。

单条用量：
高通量低，常规中高。

纯度：
高通量以中等纯度为主，
常规定制可根据需求提高。

成本结构：
高通量按批次更划算，
常规定制按单条计价。

适合阶段：
高通量适合筛选和探索，
常规定制适合验证和放大。

六、科研人员该如何选择？

你可以用这三个问题快速判断：

1. 是否需要多条序列一起测试？

2. 是否处在实验探索或筛选阶段？

3. 单条多肽需求量是否不大？

如果答案都是“是”，
高通量多肽合成，几乎一定更合适。

 高通量多肽合成，不是高级，而是“对路”

高通量多肽合成并不是取代传统多肽定制，而是：

在对的阶段，用对的方式，解决对的问题。

理解它的优势与适用边界，
比盲目追求“更高级的技术”更重要。